Nous nous concentrons actuellement sur l'organisation de l'actine au sein des axones. Nous avons découvert, avec d'autres structures, plusieurs nouvelles structures d'actine axonale, notamment des anneaux d'actine sous-membranaires et les hotspots et trails d'actine intra-axonale. Nous voulons comprendre les fonctions de ces structures et leur pertinence pour des processus physiologiques tels que le transport axonal et le bon fonctionnement des boutons présynaptiques. Pour ce faire, nous tirons parti du modèle de neurones d'hippocampe de rat en culture à faible densité afin de pouvoir visualiser la morphologie complexe des cellules et de suivre des axones individuels. Nous combinons imagerie de cellules vivantes, manipulations ciblées et microscopie à super-résolution pour relier le comportement dynamique des composants axonaux à l'organisation nanoscopique du cytosquelette. 

Nous consacrons d'importants efforts à la mise en œuvre de stratégies innovantes pour l'étiquetage, l'observation et l'analyse de ces processus. Nous sommes des spécialistes de la microscopie de localisation de molécule unique (SMLM) et nous continuons à faire progresser les méthodes, en mettant en œuvre et en testant de nouvelles techniques dès leur apparition. Cela inclut des méthodes de marquage pour une acquisition hautement multiplexée telles que DNA-PAINT, des stratégies d’acquisition automatisées et de nouveaux algorithmes d’analyse d’images.

Enfin, nous explorons la pertinence physiopathologique de notre découverte en étudiant des modèles cellulaires de la maladie d’Alzheimer, dans la mesure où le transport axonal et la fonction présynaptique sont compromis aux premiers stades de la maladie. En utilisant nos connaissances en biologie cellulaire, nous souhaitons mieux comprendre pourquoi cela se produit en étudiant l'organisation à l'échelle nanométrique de l'axone dans les modèles de maladie d'Alzheimer: modèles marins, mais aussi neurones humains obtenus à partir de cellules souches pluripotentes induites.